ارزیابی وضعیت اکسیداتیو گوساله‌ها از بدو تولد تا 3 روزگی

نویسندگان

1 بخش بیماریهای داخلی دام‌های بزرگ، دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهرکرد، شهر کرد–ایران

2 بخش کلینیکال پاتولوژی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهرکرد، شهر کرد–ایران

3 دانشجوی دامپزشکی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهرکرد، شهر کرد–ایران

چکیده

زمینه مطالعه: ‌استرس اکسیداتیو نشان دهنده عدم تعادل بین گونه‌های اکسیژن فعال ‌(ROS)‌ و توانایی سیستم بیولوژیکی در جهت خنثی سازی ترکیبات اکسیداتیو است. اختلال در وضعیت اکسیداتیو طبیعی سلول از طریق تولید پراکسید و رادیکال‌های آزاد می‌تواند اثرات سمی خود را  به تمام اجزای سلول از جمله پروتئین‌ها، لیپیدها، و ‌DNA‌ وارد نمایید. هدف: در این مطالعه تغییرات اکسیداتیو گوساله‌ها ی نوزاد تا 3 روز مورد ارزیابی قـرار گـرفـت. روش کـار: بـرای انجـام این تحقیق 20 گوساله ی نوزاد طبیعی انتخاب و از سیاهرگ وداج خون‌گیری صورت گرفت. سپس سطح مالو‌ن‌دی‌آلدهید، کاتالاز و سوپر اکسید دیسموتاز سرم اندازه گیری شد.‌ ‌نتایج: میزان مالون دی آلدهید بلافاصله پس از تولد در بالاترین سطح خود قرار داشت  و در زمان‌های 24 و 48 ساعت پس از تولد به طور معنی‌داری کاهش یافت (05/0‌ p<‌.)  میزان آنزیم کاتالاز سرم گوساله‌ها بلافا صله پس از تولد در پایین‌ترین سطح خود در طی روزهای ارزیابی شده قرار داشت سپس این میزان به طور معنی‌داری در زمان‌های 24 و 48 ساعت پس از تولد افزایش یافت (05/0‌ p<‌.) میزان آنزیم سوپر اکسید دیسموتاز سرم گوساله‌های نوزاد بلافاصله پس از تولد در پایین‌ترین سطح خود قرار داشت. سپس این میزان در زمان 24 ساعت پس از تولد بطور معنی‌داری افزایش یافت (05/0‌ p<‌.) ‌نتیجه گیری نهایی: بر اساس یافته‌های مطالعه حاضر چنین به نظر می‌رسد که با گذشت سه روز از تولد گوساله‌ها ظرفیت آنتی اکسیدانی بدن آنها افزایش یافته باشد. بهبود وضعیت اکسیداتیو گوساله‌ها را علاوه بر افزایش تدریجی توان سیستم آنتی اکسیدانی بدن آنها می‌توان به اثرات مفید دریافت آغوز نسبت داد.

کلیدواژه‌ها


عنوان مقاله [English]

Evaluation of the oxidative status in calves within 3 days of birth

نویسندگان [English]

  • Afshin Jafari Dehkordi 1
  • Abdolnaser Mohebbi 2
  • Mohammadreza Aslani 1
  • Ahmadreza Safian 3
1 Department of Large Animal Internal Medicine, Veterinary Faculty of Shahrekord University, Shahrekord-Iran
2 Department of Veterinary Clinical pathology, Veterinary Faculty of Shahrekord University, Shahrekord-Iran
3 Student of Veterinary Medicine, Shahrekord University, Shahrekord-Iran
چکیده [English]

BACKGROUND: Oxidative stress reflects an imbalance between the reactive oxygen species (ROS) and a biological system's ability to readily detoxify the oxidative agents. Disturbances in the normal redox state of cells can cause toxic effects through production of peroxides and free radicals that damage all components of the cell, including proteins, lipids, and DNA. ObjectiveS: The purpose of this study was to evaluate the oxidative status in calves within 3 days of birth. Methods: Twenty calves from Zagros dairy farm were selected. Blood samples were collected from the jugular vein at 0 (before administration of colostrum), 24, 48 and 72 hours after birth for measurement of serum levels of TBARS, Superoxide dismutase and catalase. Results: The results indicated higher levels of serum malondialdehyde concentration at birth that subsequently decreased at 24 and 48 hours after birth (p<0.05). There were lower levels of serum concentration of catalase at birth that followed by increasing in it at 24 and 48 hours after birth (p<0.05). Also, the concentration of superoxide dismutase was lower at the birth that subsequently increased at 24 hours after birth (p<0.05). Conclusions: Based on this study, it seems that antioxidant capacity of calves has been increased within 3 days of birth. Improvement of oxidative status in calves could be due to gradual increasing of their antioxidative capacity and also beneficial effects of colostrum.

کلیدواژه‌ها [English]

  • Lipid Peroxidation
  • neonatal calf
  • oxidative stress
Buege, J.A. (1978) Microsomal lipid peroxidation. Methods Enzymol. 52: 302-310.

Buege, J.A., Aust, S.D. (1976) Lactoperoxidase-catalyzed lipid peroxidation of microsomal and artificial membranes. Biochim Biophys Acta (BBA)-General Subjects. 444: 192-201.

Burlingame, J.M., Esfandiari, N., Sharma, R.K., Mascha, E., Falcone, T. (2003) Total antioxidant capacity and reactive oxygen species in amniotic fluid. Obstet Gynecol. 101: 756-761.

Chirase, N.K., Greene, L.W., Purdy, C.W., Loan, R.W., Auvermann, B.W., Parker, D.B., Walborg Jr, E.F., Stevenson, D.E., Xu, Y., Klaunig, J.E. (2004) Effect of transport stress on respiratory disease, serum antioxidant status, and serum concentrations of lipid peroxidation biomarkers in beef cattle. Am J Vet Res. 65: 860-864.

de Diego-Otero, Y., Romero-Zerbo, Y., el Bekay, R., Decara, J., Sanchez, L., Rodriguez-de Fonseca, F., del Arco-Herrera, I. (2008) a-Tocopherol protects against oxidative stress in the fragile X knockout mouse: an experimental therapeutic approach for the Fmr1 deficiency. Neuropsychopharmacology. 34: 1011-1026.

Giammarioli, S., Filesi, C., Sanzini, E. (1999) Oxidative stress markers: specificity and measure-ment techniques. Ann Ist Super Sanit. 35: 563-576.

Goth, L. (1991) A simple method for determination of serum catalase activity and revision of reference range. Clin Chim Acta. 196: 143-151.

Ho, Y.-S., Xiong, Y., Ma, W., Spector, A., Ho, D. S. (2004) Mice lacking catalase develop normally but show differential sensitivity to oxidant tissue injury. J Biol Chem. 279: 32804-32812.

Imre, S., Csornai, M., Balazs, M. (2001) High sensitiv-ity to autoxidation in neonatal calf erythrocytes: possible mechanism of accelerated cell aging. Mech Ageing Dev. 122: 69-76.

Inanami, O., Shiga, A., Okada, K., Sato, R., Miyake, Y., Kuwabara, M. (1999) Lipid peroxides and antioxidants in serum of neonatal calves. Am J Vet Res. 60: 452-457.

Janero, D.R. (1990) Malondialdehyde and thiobarbituric acid-reactivity as diagnostic indices of lipid peroxidation and peroxidative tissue injury. Free Radic Biol Med. 9: 515-540.

Kankofer, M., Lipko-Przybylska, J. (2008) Physio-logical antioxidative/oxidative status in bovine colostrum and mature milk. Acta Veterinaria. 58: 231-239.

Koracevic, D., Koracevic, G., Djordjevic, V., Andrejevic, S., Cosic, V. (2001) Method for the measurement of antioxidant activity in human fluids. J Clin Pathol. 54: 356-361.

Li, Z.-H., Zlabek, V., Velisek, J., Grabic, R., Machova, J., Randak, T. (2010) Modulation of antioxidant defence system in brain of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) after chronic carbamazepine treatment. Comparative Biochemistry and Physio-logy Part C: Toxicol Pharmacol. 151: 137-141.

Meilhac, O., Zhou, M., Santanam, N., Parthasarathy, S. (2000) Lipid peroxides induce expression of catalase in cultured vascular cells. J Lipid Res. 41: 1205-1213.

Mortola, J.P. (2001) Respiratory Physiology of Newborn Mammals: A Comparative Perspective. The Johns Hopkins University Press. Baltimore, USA.

Nakai, A., Oya, A., Kobe, H., Asakura, H., Yokota, A., Koshino, T., Araki, T. (2000) Changes in maternal lipid peroxidation levels and antioxidant enzymatic activities before and after delivery. J Nippon Med Sch. 67: 434-439.

Nassi, N., Ponziani, V., Becatti, M., Galvan, P., Donzelli, G. (2009) Antioxidant enzymes and related elements in term and preterm newborns. Pediatr Int. 51: 183-187.

Piperova, L., Cheshmedzhieva, S., Dimitrov, G. (1987) Effect of early weaning and feeding during the suckling period on lipid metabolism in lambs. III. Plasma lipids. Anim Sci. 24: 61-65.

Sandomirsky, B., Galchenko, S., Galchenko, K. (2003) Antioxidative properties of lactoferrin from bovine colostrum before and after its lyophilization. Cryoletters. 24: 275-280.

Schweizer, M., Peterhans, E. (1999) Oxidative stress in cells infected with bovine viral diarrhoea virus: a crucial step in the induction of apoptosis. J Gen Virol. 80: 1147-1155.

Shah, M.D., Shah, S.R. (2009) Nutrient deficiencies in the premature infant. Pediatr Clin North Am. 56: 1069-1083.

Trevisan, M., Browne, R., Ram, M., Muti, P., Freudenheim, J., Carosella, A. M., Armstrong, D. (2001) Correlates of markers of oxidative status in the general population. Am J Epidemiol. 154: 348-356.

Yasuda, M., Takesue, F., Inutsuka, S., Honda, M., Nozoe, T., Korenaga, D. (2002) Prognostic signific-ance of serum superoxide dismutase activity in patients with gastric cancer. Gastric Cancer. 5: 0148-0153.